Biomedical Chemistry: Research and Methods 2018, 1(3), e00025
К 40-летию Института физиологически активных веществ РАН

СОДЕРЖАНИЕ

ВВЕДЕНИЕ

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

БЛАГОДАРНОСТИ

ЛИТЕРАТУРА

Рисунок 1 Зависимость химического сдвига 43Са (δ43Са) от концентрации  лиганда L.
I: L= 15-краун-5; 1 - СаСl2 (а -эксперимент, б- расчет); 2 - Са(3)2  (а -эксперимент, б- расчет). II: L= 18-краун-6; соль - СаСl2; 1- с0= 0,2 моль/л, 2- с0= 0,5 моль/л. III: L= 18-краун-6; соль - Са (3)2; 1 - с0= 0,2 моль/л, 2 - с0=  0,3 моль/л, 3 - с0С 0,5 моль/л.

Рисунок 2 Фосфорилсодержащий ациклический поданд I.

Рисунок 3 Зависимости химического сдвига в спектрах ЯМР 7Li(а) и 23Na(b) от соотношения С0L/C0M поданда I.

Рисунок 4 Замещенный циклен II (a) и предполагаемая структура комплексного соединения Ga3+ (b).

Рисунок 5 ЯМР 31Р{H} спектры свободного циклена II (а), спектры, полученные добавлением в исходный раствор 0.1 моль (b), 0.2 моль (c), 0.5 моль (d) и 1.0 моль (e) Ga(NO3)3 при Т=298 К.

Рисунок 6 Cпектры  ЯМР 13С{H}  лиганда IV:  исходный лиганд (a); при добавлении 0.2 (b) и 0.5 (c) мольных эквивалента Ga(NO3)3.

Таблица 1 Расчетные параметры комплексов СаСl2 и Са(NО3)2 с 15-краун-5 и их стандартные отклонения.

Таблица 2 Логарифмы констант равновесия и химические сдвиги комплексообразования 18-краун-6 с СаСl2 и Са(NО3)2 в воде.

Таблица 3 Логарифмы констант устойчивости и химические сдвиги комплексов триподанда I (L) с LiNCS и NaNCS в ацетонитриле при 288 ± 1 К.

Исследования комплексообразования в растворах методом ЯМР

В.О. Завельский*, И.П. Калашникова, В.П. Казаченко, В.Е. Баулин, О.А. Раевский

Институт физиологически активных веществ Российской академии наук 142432 Черноголовка Московской обл., Северный проезд, 1; *e-mail: zvl@ipac.ac.ru

Ключевые слова: ЯМР-спектроскопия; комплексообразование; лиганд; краун-эфиры; поданд; циклен

DOI: 10.18097/BMCRM00025

ВВЕДЕНИЕ

Комплексообразование играет существенную роль в целом ряде биологических процессов, без которых невозможно функционирование живых организмов. Комплексные структуры непосредственно участвуют в процессах катализа [1,2], экстракции катионов металлов в биологических системах [3], играют существенную роль в трансмембранном переносе ионов [4], во взаимодействии субстрат – рецептор [5], что стимулирует изучение динамики и механизмов комплексообразования, установление центров координации в молекулах лигандов, уточнения их роли и степени участия в образовании связи металл-лиганд. Изучение процессов комплексообразования органических лигандов с катионами биологически значимых металлов – одно из научных направлений, традиционно развивающееся в ИФАВ РАН, при этом большинство органических лигандов синтезировано в лабораториях института.

Основной задачей данной работы являлось изучение процесса комплексообразования методом ЯМР некоторых органических лигандов, с биологически значимыми ионами металлов - Li+, Na+, Ca2+, Ga3+. Биологическая важность соединений кальция и натрия широко известна и изучение комплексообразования  с этими элементами постоянно остается актуальной задачей.  Соединения лития,  участвуя в углеводном и жировом обменах [6], снижая нервную возбудимость [7], эффективно применяются в медицине [8,9]. Интерес к изучению соединений галлия обуславливается возрастающей ролью в ядерной медицине радиоизотопа 68Ga, входящего в состав современных радиофармпрепаратов [10-13].

Давно известно, что концентрация кальция внутри и снаружи живой клетки различается на три порядка и что изменение этого соотношения ведет к серии биохимических и физиологических процессов [14]. Повлиять на транспорт ионов кальция через биологические мембраны можно с помощью различных полидентатных лигандов [15]. Среди таких систем особое внимание привлекают макроциклические полиэфиры (краун-эфиры), которые можно рассматривать не только как удобные модели распознавания [16], но и как биологически активные вещества [17]. Структура краун-эфиров, их поведение в растворах и, в особенности, процессы комплексообразования давно являются предметом многочисленных исследований, среди которых существенные результаты получены при использовании методик ЯМР [18,19]. Ациклические аналоги краун-эфиров – поданды также являются эффективными лигандами, обладающими высокой селективностью к катионам биологически значимых металлов. Интенсивно изучаемые в последнее время лиганды, содержащие фрагменты 1,4,7,10-тетраазациклододекана (циклена), эффективно связывающие катионы d- и f-элементов, широко применяются в качестве компонентов радиофармпрепаратов [20,21]

По сравнению с другими методами исследований, спектроскопия ЯМР имеет значительные преимущества. Концентрационные зависимости параметров ЯМР-спектров на ядрах металлов – химического сдвига и ширины линии соответствующих сигналов, позволяют установить константы устойчивости комплексов и их стехиометрию, а также дают возможность наблюдать брутто-эффект комплексообразования (динамический ЯМР на ядрах металлов – 43Ca, 7Li, 23Na и пр.). Можно полагать, что химический сдвиг в спектрах ЯМР металлов в комплексах является мерой ковалентности связи металл-лиганд, а ширина линии сигнала ЯМР  - мерой устойчивости комплекса [22].

ЯМР на различных ядрах лиганда (1Н, 31Р, 13С), в первую очередь атомов, непосредственно связанных с металлом, позволяет различить отдельные центры координации в молекуле лиганда, устанавливать электронную структуру комплекса, возможные конформационные изменения в молекуле лиганда при комплексообразовании и изучать  отдельные центры координации в лиганде [23].

В данной статье описаны результаты некоторых наиболее интересных исследований, потенциально представляющих практический интерес для различных областей техники и медицины. Цель данной работы – показать, что применение ЯМР- спектроскопии для определения особенностей взаимодействия лиганда и катиона металла может быть простым, удобным и информативным подходом для первичной оценки перспективы применения органических лигандов в качестве комплексообразователей.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Соли СаСl2 и Са(NО3)2  марки “ч.”  прокаливали при 200°C в токе сухого аргона в течение 25 - 30 ч. до постоянной массы и хранили  в эксикаторе  над Р2О5. Тиоцианаты щелочных металлов LiNCS × H2O и NaNCS (98%)  («Aldrich») перед исследованием обезвоживали по методике, описанной в работе [24]. Ga(NO3)3 × 6H2O «Acrus organics» 99.9% применяли без дополнительной очистки.

В качестве лигандов применялись краун-эфиры: 15-краун-5 (98%) и 18-краун-6 99% («Aldrich»). Согласно методикам, опубликованным ранее синтезированы трис-[(о-дифенилфосфиноилметил)-феноксиэтил]амин [25] и   1,4,7,10- тетраазациклододекан-1,4,7,10-тетраметиленфосфоновой кислоты [23,26].

Спектральные исследования проводили в растворе D2O (Deuteriumoxide, for NMR, 100.0 atom % D, «Acrus organics»). Спектры ЯМР 43Са, 7Li и 23Na записаны на импульсном Фурье-спектрометре ЯМР «Bruker-СXP-200» (резонансные частоты 13.46, 77.7 и 52.9 МГц соответственно) во внешнем магнитном поле 4.67 Тл при температуре 291К.  Для получения спектров ЯМР исследуе­мые растворы коаксиально размещались в откалиброванных 10-мм ампулах. В  качестве внешнего эталона для 43Са использован 3,2 М раствор  СаС12 в D2О. В спектрах 7Li,  23Na 0.1 М растворы LiCl и NaCl в D2О, использовались качестве внешних эталонов, а также для стабилизации поля.

Спектры ЯМР 31Р и  13С регистрировали в откалиброванных 5-мм ампулах на спектрометре «Bruker-DPX-200» при частотах соответственно  81.0 и 50.04  МГц. В качестве стандартов использовались тетраметилсилан (внутренний эталон) и 85% Н3РО4 (внешний эталон). Образцы готовили путем объединения растворов точно отмеренных навесок соли и лиганда в D2O.

Для анализа схемы комплексообразования, расчета констант  равновесий, и химических сдвигов  комплексов концентрационные зависимости параметров ЯМР-спектров обрабатывали с привлечением программ  ЕQ [27], FLEXI и симплекс-метода  [28].

Экспериментальные кривые, представляющие зависимость химического сдвига 43Са от концентрации лиганда, обработаны методом наименьших квадратов с использованием универсальной программы расчета равновесий в растворах, включающей использование уравнений материального баланса, констант равновесия и уравнения, связывающего наблюдаемый химический сдвиг с химическими сдвигами и концентрациями компонент равновесия [29].

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

С позиции биологической активности наибольший интерес представляют данные о механизмах комплексообразования и структуре комплексов в водной среде.

Комплексообразование хлорида кальция с 18-краун-6 в  воде исследовалось ранее методом титрационной калориметрии, однако тепловой эффект взаимодействия обнаружен не был ввиду малой величины энтальпии  и (или)  константы взаимодействия [30]. Применяя ЯМР 43Са, позволяющий наблюдать за атомом кальция - нуклидом, непосредственно участвующим в комплексообразовании, удалось обнаружить взаимодействие 15-краун-5 и 18-краун-6 с солями СаХ2 (Х = NО3-,  Сl-) в воде [31]. Следует подчеркнуть, что естественное содержание магнитного изотопа 43Са ничтожно – лишь 0.143%. Точность измерения химического сдвига составила  ± 0,3 м.д.

Изменения химического сдвига в зависимости от концентрации (рис.1) свидетельствуют о комплексообразовании в системе [СаСl2, Са(NО3)2, - краун-эфиры]. В условиях быстрого обмена наблюдаемый химический сдвиг d аддитивен относительно химических сдвигов компонент равновесия [29]:

$$δ=\sum^n_{i=1}{δ_i{{c_i}\over {c^0_x}}}$$
(1),

где n - число компонент равновесия; di, сi - химический сдвиг и равновесная концентрация i-го компонента; сx0 - начальная концентрация  компонента, содержащего резонирующее ядро. При обработке  экспериментальных результатов в качестве измеряемого свойства раствора использовали значения:
$$F_{exp}=δ_{exp}c^0_x$$
(2).

Варьируемыми параметрами были константы устойчивости и химические сдвиги комплексов. Степень согласия найденного решения с экспериментом характеризовалась величиной R-фактора в %:

$$R=100{[{{\sum^N_{k=1}{{(F_{k\ exp}-F_{k\ theor})}^2}}\over {\sum^N_{k=1}{F^2_{k\ exp}}}}]}^{{{1}\over {2}}}$$
(3),

где N - число экспериментальных точек.

Рисунок 1. Зависимость химического сдвига 43Са (δ43Са) от концентрации  лиганда L.
I: L= 15-краун-5; 1 - СаСl2 (а -эксперимент, б- расчет); 2 - Са(3)2 
(а -эксперимент, б- расчет).

II:
L= 18-краун-6; соль - СаСl2; 1- с0= 0,2 моль/л, 2- с0= 0,5 моль/л.
III:
L= 18-краун-6; соль - Са (3)2; 1 - с0= 0,2 моль/л, 2 - с0=  0,3 моль/л, 3 - с0С 0,5 моль/л.

Концентрационные константы устойчивости и химические сдвиги комплексов вычислялись по схеме Ca2+ + L ↔ СаL2+, где L - лиганд. Параметры этой модели определяли в двух вариантах (табл. 1).

Закрыть окно
Таблица 1. Расчетные параметры комплексов СаСl2 и Са(NО3)2 с 15-краун-5 и их стандартные отклонения.

В первом варианте вычислялись концентрационные константы устойчивости и химические сдвиги комплексов. Как видно из таблицы 1, логарифм константы равновесия LgК, для СаСl2 больше, чем для Са(NО3)2. Такое различие в константах может быть обусловлено разными значениями средних коэффициентов активности  исследуемых солей. Во втором варианте для проверки этого предположения был проведен расчет, в котором для получения термодинамических констант равновесия данные по d(43Са) обрабатывали с учетом средних коэффициентов активности солей.  Поскольку эти данные получены при практически постоянной концентрации  соли, коэффициенты активности СаС12 и Са(NO3)2 принимали равными 0,445 и 0,372 соответственно [32]. Коэффициенты активности остальных частиц приняты равными единице (для лиганда L - в силу электронейтральности, а для CaL2+- из-за малой  концентрации  образующегося комплекса). Как  оказалось, различие термодинамических   констант  устойчивости остается вполне заметным и лежит за пределами ошибок определения. Таким образом, полученные результаты показывают, что  при использованных концентрациях компонентов устойчивость  комплексов CaL2+  в водной среде зависит от природы аниона.

Рассчитанные химические сдвиги и  термодинамические величины  комплексообразования 18-краун-6 с CaCl2 и Ca(NО3)2  по данным ЯМР  43Са  приведены в таблице 2. Из данных таблицы следует, что с возрастанием ионной силы   при  комплексообразовании 18-краун-6 с Ca(NО3)2 LgК уменьшается, а с CaCl2  возрастает. Анализируя  результаты  исследования  взаимодействия   солей  кальция с  18-краун-6, необходимо отметить, что замена  аниона NO3- на  Сl- в  составе соли  кальция привела к изменению всех термодинамических величин комплексообразования, а также химических сдвигов комплексов. Эти выводы представляются важными, поскольку в предшествующих исследованиях комплексообразования   краун-эфиров  с солями различных металлов влияние природы аниона на термодинамические характеристики реакций не учитывалось.

Закрыть окно
Таблица 2. Логарифмы констант равновесия и химические сдвиги комплексообразования 18-краун-6 с СаСl2 и Са(NО3)2 в воде.

Ациклические аналоги краун-эфиров – поданды также являются интересными лигандами, предоставляющими возможность синтеза рецепторов с выраженными, заранее  заданными катион - селективными и спектральными свойствами. Систематические исследования координации неорганических катионов такими подандами в растворах методами мультиядерного динамического ЯМР предоставляют интересную информацию об электростатических, гидрофобных и донорно - акцепторных взаимодействиях при комплексообразовании.

Нами проведены исследования взаимодействия фосфорилсодержащего ациклического поданда - трис-[(о-дифенилфосфиноилметил)-феноксиэтил]амина I (рис. 2), с образованием комплексов с солями лития и натрия методом ЯМР 7Li и 23Na [25].

Рисунок 2. Фосфорилсодержащий ациклический поданд I.

Спектры ЯМР 7Li полу­чены при концентрации соли LiNCS = 8 ммоль/л ти­трованием ее раствором лиганда, концентрация которого изменялась в диапазоне 0.7-12.0 ммоль/л. Аналогичные кривые титрования для ядра 23Na получены при концентрации соли NaNCS и лиганда соответственно 20.0 и  0.7-28.4 ммоль/л. Спектры ЯМР 7Li и 23Na представляют собой синглеты, ширина кото­рых растет с увеличением концентрации лиганда. Сигнал при этом смещается в слабое поле. Погрешность измерения химических сдвигов в спектрах ЯМР 7Li составляла ±0.006 м. д., а в спе­ктрах ЯМР 23Na - ±0.08 м. д. вследствие сущест­венно большей ширины сигнала. Эти погрешности на два порядка меньше наблюдаемых изменений в химических сдвигах, обусловленных комплексообразованием. На рис. 3 представлены кривые зависимости  химического  сдвига  в спектрах ЯМР 7Li(а) и 23Na(b) от концентрации  поданда I. Расчет констант равновесия комплексов и химических сдвигов по экспериментальным зависимостям рис.3 проводился вышеупомянутой методикой  [29].

Рисунок 3. Зависимости химического сдвига в спектрах ЯМР 7Li(а) и 23Na(b) от соотношения С0L/C0M поданда I.

В таблице 3 приведены логарифмы констант устойчивости и значения химических  сдвигов комплексов триподанда I с роданидами лития и натрия в ацетонитриле, полученные из экспериментов ЯМР 7Li и 23Na.

Закрыть окно
Таблица 3. Логарифмы констант устойчивости и химические сдвиги комплексов триподанда I (L) с LiNCS и NaNCS в ацетонитриле при 288 ± 1 К.

Кроме краун-эфиров и их ациклических аналогов перспективными комплексообразующими лигандами являются производные тетраазациклододекана (циклена), входящего в состав современных остеотропных радиофармпрепаратов (РФП). Интересные результаты получены при комлексообразовании фосфорилированного производного циклена - 1,4,7,10-тетраазациклододекан-1,4,7,10-тетраметиленфосфоновой кислоты (II), рис. 4а) с катионом Ga3+ [23,33]. В этом случае природа сделала нам подарок, позволив наблюдать редкое явление, когда в спектрах ЯМР сигналы связанных и свободных в динамике комплексообразования ядер разделяются.

Рисунок 4. Замещенный циклен II (a) и предполагаемая структура комплексного соединения Ga3+ (b).

Спектр 31Р{H} соединения (II) представляет собой уширенный синглет с шириной Δ~33Гц с химическим сдвигом δ=11.83 м.д. Анализ экспериментальных спектральных данных показывает, что взаимодействие (II) с катионом Ga3+ приводит к уменьшению интегральной интенсивности сигнала свободного лиганда при неизменной, в пределах погрешности эксперимента, его ширине и значении химического сдвига и, одновременно, к появлению двух новых, значительно более узких (Δ~4Гц и Δ~4.5Гц), сигналов близкой интенсивности при δ = 12.63 и 10.68 м.д., которые, по-видимому, можно отнести к образованию галлиевого комплекса. Одна из возможных его форм представлена на рис. 4b

Увеличение концентрации Ga3+  в исследуемом образце приводит к постепенному возрастанию интегральной интенсивности сигналов комплексного соединения,  причем сигнал исходного лиганда, постепенно уменьшаясь, полностью исчезает  при достижении эквимолярных концентраций лиганда и Ga3+.  Полученные результаты представлены на рис.5.

Рисунок 5. ЯМР 31Р{H} спектры свободного циклена II (а), спектры, полученные добавлением в исходный раствор 0.1 моль (b), 0.2 моль (c), 0.5 моль (d) и 1.0 моль (e) Ga(NO3)3 при Т=298 К.

Предположительно, внедряясь в азотную нишу плоскости цикла, катион Ga3+ фиксируется в ней с двух сторон атомами кислорода фосфорильных фрагментов, попадая в своеобразную «ловушку» (рис. 4б). В результате обмен лиганд ⇄ комплекс практически отсутствует, вследствие чего в спектре одновременно фиксируются  сигналы как образующегося комплекса, так и исходного свободного лиганда. Заметное сужение сигналов комплексного соединения по сравнению с сигналом свободного (IIa), можно объяснить тем, что атомы азота и частично фосфорильные атомы кислорода, связываясь с катионом галлия, не участвуют в процессе протонного обмена при образовании внутри- и межмолекулярных ассоциатов. При этом наблюдается противоположное направление сдвигов сигналов различных фосфорильных групп комплекса относительно сигнала лиганда. Сигнал атомов фосфора, связанных с катионом Ga3+, в результате дезэкранирования сдвигается в слабое поле относительно сигнала лиганда, в то время как магнитное экранирование ядер в несвязанных с катионом Ga3+ фосфорильных фрагментах способствует смещению сигнала в сильное поле. Несколько большая ширина сигнала, находящегося в сильном поле также указывает на то, что его можно отнести к несвязанным с катионом галлия фосфорильным фрагментам.

Cпектр  ЯМР 13С{H} циклена IIa содержит слабо расщепленный сигнал при 50.27 м.д, соответствущий атомам цикленового фрагмента  и дублет с 1JCР=132.8 Гц,  отнесенный к атомам углерода внешнециклической метиленовой группы (рис.6а).

При добавлении соли галлия в спектрах ЯМР 13С наблюдается уменьшение интенсивности сигналов свободного лиганда, и отмечается появление двух новых групп сигналов как экзоциклических, так и цикленовых -СН2- фрагментов, указывающих на неэквивалентность не только метиленфосфорильных фрагментов, но и углеродных атомов цикла, которая появляется при образовании комплекса (рис. 6 b, c). Сигналы эти заметно сдвинуты в слабое поле. Незначительно изменяются также величины 1JСP.

Рисунок 6. Cпектры  ЯМР 13С{H}  лиганда IV:  исходный лиганд (a); при добавлении 0.2 (b) и 0.5 (c) мольных эквивалента Ga(NO3)3.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Методами спектроскопии ЯМР исследованы процессы комплексообразования краун-эфиров, их ациклических аналогов (подандов) и производных циклена - органических лигандов, имеющих перспективы доля практического применения в технике и медицине, с катионами биологически значимых  металлов (Li+, Na+, Ca2+, Ga3+).

Установлено, что, несмотря на очень малую природную концентрацию магнитного изотопа кальция, чувствительность метода ЯМР 43Ca оказалась существенно выше, чем при калориметрических измерениях. Это позволило не только зафиксировать образование комплекса с небольшими константами устойчивости, но и установить его константы равновесия. Показано, что  устойчивость  комплексов СаL2+  с краун-эфирами и ациклическими подандами в водной среде существенно зависит от природы аниона. Установлена высокая селективность ациклического поданда к катионам лития и, в меньшей степени, натрия.

Показана возможность применения метода ЯМР 31Р и 13С для первичного тестирования комплексообразования цикленсодержащих фосфоновых кислот с катионом Ga3+ в D2O. С помощью ЯМР 31Р  наглядно продемонстрировано, что циклен проявляет высокую способность к комплексообразованию с катионами Ga3+, при этом процесс обмена лиганд-комплекс в растворе практически отсутсвует, что открывает возможности для создания перспективных водорастворимых фосфорилированных лигандов для ядерной медицины.

БЛАГОДАРНОСТИ

Работа выполнена в рамках Государственного задания 2018 года (темы №0090-2017-0024 и 0081-2014-0015), РФФИ (грант № 18-03-00743) и частичной поддержке Программы Президиума РАН № 38.

ЛИТЕРАТУРА

  1. Duca G. (2012). Homogeneous Catalysis with Metal Complexes: Fundamentals and Applications. Springer Science & Business Media, DOI
  2. Sasmal P. K, Streu C. N, Meggers E. (2013). Metal complex catalysis in living biological systems. Chem Commun (Camb), 49(16), 1581-1587. DOI
  3. Al Zoubi W. (2013). Solvent extraction of metal ions by use of Schiff bases. Journal of Coordination Chemistry, 66(13), 2264-2289. DOI
  4. Zhang Z., Buffle J., van Leeuwen H. P., Wojciechowski K. (2006). Roles of Metal Ion Complexation and Membrane Permeability in the Metal Flux through Lipophilic Membranes. Labile Complexes at Permeation Liquid Membranes. Analytical Chemistry, 78(16), 5693-5703 DOI
  5. Hamilton A.D., Fan E., van Arman S., Vicent C., Tellado F. G., Geib S. J. (1993). Molecular recognition. Design of new receptors for complexation and catalysis. Supramolecular Chemistry, 1(3-4), 247-252. DOI
  6. Vendsborg P. B., Vilstrup H. (1976). The Influence of Lithium on Carbohydrate and Lipid Metabolism in the Perfused Rat Liver. Acta Pharmacologica et Toxicologica, 38(1), 10-16. DOI
  7. Kaas G. A., Kasuya J., Lansdon P., Ueda A., Iyengar A., Wu C.-F., Kitamoto T. (2016). Lithium-Responsive Seizure-Like Hyperexcitability Is Caused by a Mutation in the Drosophila Voltage-Gated Sodium Channel Gene paralytic. eNeuro, 3(5), 1-23. DOI
  8. de Sousa R. T, Streck E. L, Zanetti M. V, Ferreira G. K, Diniz B. S, Brunoni A. R, Busatto G. F, Gattaz W. F, Machado-Vieira R. (2015). Lithium increases leukocyte mitochondrial complex I activity in bipolar disorder during depressive episodes. Psychopharmacology, 232(1), 245-50. DOI
  9. Freeman M. P., Freeman S. A. (2006). Lithium: Clinical Considerations in Internal Medicine. The American Journal of Medicine, 119(6), 478–481. DOI
  10. Baum R. P., Rosch F. (2013). Theranostics, Gallium-68, and other radionuclides. Heidelberg, New York, Dordrecht, London: Springer. DOI
  11. Velikyan I. (2015). Continued rapid growth in (68) Ga applications: update 2013 to June 2014. J. Label Compd. Radiopharm., 58(3), 99-121. DOI
  12. Larenkov A. A., Kodina G. E., Bruskin A. B. (2011). Gallium Radionuclides in Nuclear Medicine: Radiopharmaceuticals Based on 68Ga. Ìedical Radiology and Radiation Safety, Russian edition 56(5), 56-73.
  13. Welch M.J., McCarthy T.J. (2000). The potential role of generator-produced radiopharmaceuticals in clinical PET. The Journal of Nuclear Medicine, 41(2), 315–317.
  14. Hughes M.N. (1983). The Inorganic Chemistry of Biological Processes. John Willey and Sons Chichester, New York, Brisbane, Toronto.
  15. Martell A. E. (1981). Chemistry of Carcinogenic Metals. Environmental Health Perspectives 40, 207-226.
  16. Lehn J.M. (1979). Macrocyclic receptor molecules: Aspects of chemical reactivity. Investigations into molecular catalysis and transport processes. Pure and Applied Chemistry, 51 (5), 979-997.
  17. Bogatsky A.V. (1983). Achievements and New Trends in the Chemistry of Synthetic Macrocyclic Complexons. Russian Journal of Bioorganic Chemistry (Bioorganicheskaya khimiya), Russian edition 9(11), 1445-1482.
  18. Peters S. J., Stevenson C. D. (2004). The Complexation of the Na+ by 18-Crown-6. Studied via Nuclear Magnetic Resonance. J. Chem. Education, 81(5), 715-720. DOI
  19. M. Shamsipur, M. Irandoust (2012). 7Li-NMR study of the stoichiometry, stability and exchange kinetics of Li+ ion with 12-Crown-4, 15-Crown-5 and cryptands C222, C221 and C211 in 50% ionic liquid–acetonitrile mixtures. Polyhedron 31(1), 395-401. DOI
  20. Wadas T. J., Wong E. H, Weisman G. R., Anderson C. J. (2010). Coordinating radiometals of copper, gallium, indium, yttrium, and zirconium for PET and SPECT imaging of disease. Chem. Rev., 110(5), 2858-2902. DOI
  21. Esteves C. V., Madureira J., Lima L. M. P., Mateus P., Bento I., Delgado R. (2014). Gallium(III) Complexes of trans-Bis(2-hydroxybenzyl) Cyclen Derivatives: Absence of a Cross-Bridge Proves Surprisingly More Favorable. Inorg. Chem., 53(9), 4371-4386. DOI
  22. Fielding L. (2007). NMR methods for the determination of protein–ligand dissociation constants. Progress in Nuclear Magnetic Resonance Spectroscopy, 51(4), 219–242. DOI
  23. Tsebrikova G. S., Baulin V. E., Kalashnikova I. P., Tsivadze A. Y., Ragulin V. V., Zavel'skii V. O., Maruk A. Y., Lunev A. S., Klement’eva O. E., Kodina G. E. (2015). Cyclen-containing phosphonic acids as components of osteotropic 68Ga radiopharmaceuticals. Russian Journal of General Chemistry, 85(9), 2071–2079. DOI
  24. Solov'ev V.P., Baulin V.E., Strakhova N.N., Govorkova L.V. (1994). Thermodynamics and selectivity of complexation of lithium and sodium thiocyanates wich phosphorus-contaning podands and compounds modeling the terminal groups of these podands. Russian Chemical Bulletin, 43(9), 1493-1499. DOI
  25. Baulin V. E., Solov'ev V. P., Strakhova N. N., Kazachenko V. P., Zavel'skii V. O. (1996). Complexation of neutral phosphoryl-containing tripodandtris[(o-diphenylphosphinoylmethyl)phenoxyethyl]amine and analysis of its cationic selectivity to lithium, sodium, and potassium in acetonitrile: Lithium selectivity and polynuclear complexes. Russian Journal of Coordination Chemistry, 22(4), 238-244.
  26. Lazar I., Hrncir D.C., Kim W.-D., Kiefer G.E., Sherry A.D. (1992). Optimized synthesis, structure, and solution dynamics of 1,4,7,10-tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetrakis(methylenephosphonic acid) (H8DOTP). Inorg. Chem., 31(21), 4422-4424. DOI
  27. Novikov V. P., Raevskii O. A. (1983). Calculation of equilibria in solutions by combined treatment of data from different physicochemical methods. Russian Chemical Bulletin, 32(6), 1208-1212. DOI DOI
  28. Himmelblau D. M. (1976). Applied nonlinear programming. New York [etc.]: McGraw-Hill.
  29. Hartley F. R., Burgess C., Alcock R. M. (1983). Solution equilibria. (Chichester etc.).
  30. Solov'ev V. P., Govorkova L. V., Raevskii O. A., Baulin V. E., Syundyukova V. K., Tsvetkov E. N. (1991). Phosphorus-containing podands. 6. Calorimetric study of complexation of 1,17-bis (diphenylphosphinyl)-3,6,9,12,15-pentaoxaheptadecane with alkali and alkaline-earth metal salts in acetonitrile. Bulletin of the Academy of Sciences of the USSR. Division of Chemical Sciences, 40(3), 497-502. DOI
  31. Zavelsky V. O., Kazachenko V. P., Novikov V. P., Solov’ev V. P., Raevsky O. A. (1986). Russian Journal of Coordination Chemistry (Koordinatsionnaya Khimiya), Russian edition 12(8), 1060-1062.
  32. Efimov A. I, Belorukova L. P, Vasilkova I. V, Chechev V. P. (1983). Properties of inorganic compounds. Reference book. Leningrad. Chemistry. p. 383.
  33. Tsebrikova G. S., Baulin V. E., Kalashnikova I. P., Ragulin V. V., Zavelsky V. O., Maruk A.Y., Klementyeva O. E., Kodina G. E., Tsivadze A.Y. (2015). Synthesis of cyclene-phosphonic acid derivatives and preliminary investigation of Ga3+ binding by NMR and TLC. The Journal of Nuclear Medicine, 56(5), (supplement 2), 23. DOI